藥敏實驗方法 藥敏實驗方法 1.實驗材料: 1.1培養基:如做大腸桿菌的藥敏試驗可選擇普通營養瓊脂或麥康凱培養基,做沙門氏菌可選擇SS培養基,巴氏桿菌可選擇血液瓊脂。 1.2藥敏試紙:購買、自制或廠家提供 1.3細菌:從病雞病變部位提取,如肝臟、心臟、脾臟等臟器。 1.4接種環、酒精燈、打孔器、牛津杯 1.5移液器、滴頭 2.實驗準備: 2.1藥敏片的準備:自制 2.1.1藥敏片的制備:取定性濾紙,用打孔機打成6毫米直徑的圓形小紙片,取圓紙片50片放入清潔干燥的青霉素空瓶中,瓶口以單層牛皮紙包扎,經15磅15-20分鐘高壓消毒后,放在37℃溫箱或烘箱中數天,使*干燥。 2.2.2抗菌藥紙片制作:在上述含有50片紙片的青霉素瓶內加入藥液適量,并翻動紙片,使各紙片充分浸透藥液,翻動紙片時不能將紙片搗爛。同時在瓶口上記錄藥物名稱,放37℃溫箱內過夜,干燥后即密封,切勿受潮,置陰暗干燥處存放,有效期3-6個月。 2.2藥液的制備(用于商品藥的試驗):按商品藥治療量3-5倍比例配制藥液;如治療量為1L水加1g藥,配制藥液時就是1g加200-300ml水或1L水加3-5g藥,及配制藥敏片所用的藥液。 3.實驗操作方法: 3.1藥敏片法 3.1.1在“超凈臺”(或自制無菌操作臺)中,用(酒精燈)經火焰滅菌的接種環從病料中挑取適量細菌培養物,以劃線方式將細菌涂布到平皿培養基上。具體方式:用滅菌接種環取適量細菌分別在平皿邊緣相對四點涂菌,以每點開始劃線涂菌至平皿的1/2,然后找到第二點劃線至平皿的1/2,依次劃線,直至細菌均勻密布于平皿。(另:可將待試細菌于少量生理鹽水中制成細菌混懸液,將少量混懸液倒入平皿培養基上,輕晃平皿使鋪勻,放置5-10min)。 3.1.2將鑷子于酒精燈火焰滅菌后略停,取藥敏片貼到平皿培養基表面。為了使藥敏片與培養基緊密相貼,可用鑷子輕按幾下藥敏片。為了使能準確的觀察結果,要求藥敏片能有規律的分布于平皿培養基上,一般可在平皿中央貼一片,外周可等距離貼若干片(外周一般可貼4-5片),每種藥敏片的名稱要記住。 3.1.3將平皿培養基倒置放于37℃溫箱中培養24小時后,觀察效果。 4.結果觀察: 在涂有細菌的瓊脂平板上,抗菌藥物在瓊脂內向四周擴散,其濃度呈梯度遞減,因此在紙片周圍一定距離內的細菌生長受到抑制。過夜培養后形成一個抑菌圈,抑菌圈越大,說明該菌對此藥敏感性越大,反之越小,若無抑菌圈,則說明該菌對此藥具有耐藥性。其直徑大小與藥物濃度、劃線細菌濃度有直接關系。 5.判定標準: 5.1藥敏實驗的結果,應按抑菌圈直徑大小作為判定敏感度高低的標準。 表1 藥物敏感實驗判定標準
5.2 藥物敏感實驗判定標準參考表1,抑菌圈直徑在15毫米以上為高敏,10毫米以下為低敏,無抑菌圈為不敏。 6.影響藥敏結果的因素: 6.1培養基:應根據試驗菌的營養需要進行配制。傾注平板時,厚度合適(約5-6mm),不可太薄,一般90mm直徑的培養皿,傾注培養基18-20ml為宜。培養基內應盡量避免有抗菌藥物的拮抗物質,如鈣、鎂離子能減低氨基糖苷類的抗菌活性,胸腺嘧啶核苷和對氨苯甲酸(PABA)能拮抗磺胺藥和TMP的活性。 6.2細菌接種量:細菌接種量應恒定,如太多,抑菌圈變小,能產酶的菌株更可破壞藥物的抗菌活性。 6.3藥物濃度:藥物的濃度和總量直接影響抑菌試驗的結果,需配制。 6.4培養時間:一般培養溫度和時間為37℃、12-24小時,有些抗菌藥擴散慢如多粘菌素,可將已放好抗菌藥的平板培養基,先置4℃冰箱內2-4小時,使抗菌藥預擴散,然后再放37℃溫箱中培養,可以推遲細菌的生長,而得到較大的抑菌圈。 7.應用 藥敏實驗后,應選擇高敏藥物進行治療,也可選用兩種藥物協助使用,以減少耐藥菌株。在選擇高敏藥物時應考慮藥物的吸收途徑,因為我們藥敏實驗是藥液直接和細菌接觸,而在給禽用藥的時候,必須通過機體的吸收才能使藥物達到一定的效果,所以在給禽用藥時,高敏藥物一定要配合適宜的給藥方法,這樣才會達到好的治療效果。 附表2 山東省2004年1-5月份大腸桿菌和沙門氏菌常用藥物敏感程度參考表
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